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细胞冻存的 7 个注意事项

人阅读 发布时间:2020-04-24 16:48

一、细胞冻存

方法:

冻存液最好现配:按 1:3:6(或 1:2:7) 配冻存液 1 份 DMSO3 份血清和 6 份培养基(养细胞时用什么培养基冻存时就用什么培养基)。取生长状态量好的细胞进行冻存处理,对于贴壁细胞:
1、吸出旧培养液加 PBS 冲洗一次
2、胰酶消化
3、加培养基中止消化,有的细胞是加血清中止
4、离心收集细胞,不同细胞离心率不一样(以上仅为贴壁细胞,悬浮细胞收集就用第四部)
5、吸出离心管上清液,加 1mL 的冻存液重悬细胞,移到冻存管,放 4 度半小时,-20 度两小时,-70 度过夜,再放液氮长期保存

悬浮细胞:直接离心收集,PBS 洗涤

注意事项:

1、错误的时机:细胞状态不好(长的太过了,培养液已经很黄;细胞可疑污染;细胞已 经开始凋亡或崩解;连续培养超过二个月,细胞性状已有改变改变)。
解决:最佳时机:细胞增殖旺盛,情况稳定,试验效果良好,复苏后两周内。

2、细胞太少:冻存时细胞浓度低于 1-5×1000,000/ml。(复苏很难成功)。
解决:离心后调整细胞浓度(不要重新洗细胞)。

3、盖子不紧:冻存管的盖子一定要拧紧,否则复苏水浴时会渗水,造成污染。
解决:选择原配的管子和盖子(不同牌子 / 型号的颜色会有差别)。

4、单薄的冻存盒:放在 -80 度的冻存盒,壁太薄,细胞在被迅速降温。
解决:选择厚壁泡沫塑料盒,或塞入大量干棉花。(冻存的原则:缓降!)

5、-80 度太久:放在 -80 度冰箱的时间超过半年(冰箱的温度难以恒定:开门 / 关门,电压不稳等)。
解决:尽快转入液氮。

6、液氮不足:液面不能漫过所有细胞。
解决:定期测量液氮储备,保证细胞全部浸在液面下。

7、取错细胞:找不到 / 拿错冻存管。
解决:每支冻存管都标上细胞的名称,冻存时间,并记录在册。


二、细胞复苏:

方法:

1、从液氮容器中取出冻存管,直接浸入 37 ℃ 温水中,并不时摇动令其尽快融化。
2、从 37 ℃ 水浴中取出冻存管,打开盖子,用吸管吸出细胞悬液,加到离心管并滴加 10 倍以上培养液,混匀;
3、离心, 1000 rpm,5 min;
4、弃去上清液,加入含 10% 小牛血清培养液重悬细胞,计数,调整细胞密度,接种培养瓶,37 ℃ 培养箱静置培养;
5、次日更换一次培养液,继续培养。

注意事项:

1、取错细胞:拿错冻存管(快快快,匆忙之中,难免出错,况且 -170 多度,冻手!)
解决:
(1)核查记录册及冻存管上细胞的名称、时间是否一致。
(2)拿细胞时戴手套!

2、水浴时间太长:2min 还没融化(冻存管的壁较厚,隔热)。
解决:
(1)适当提高水浴温度(37 度-40 度)。
(2)要是冬天,就选用保温盒。

3、冰盒内时间太长:复苏 1h 后,还没有加入新的培养液。(高浓度 DMSO 防止胞内形成冰晶,冻存时保护细胞,但复苏融解后,浸泡时间太久会,对细胞有毒性)
解决: 提前预定超净台,减少复苏后插在冰盒里等待的时间。

4、失去耐心:复苏三四天后,细胞没有任何动静,认为失败,倒掉所有细胞(有些细胞复苏后一星期,才有起色)。
解决:不要换液,耐心等待,两周后再做决定,英格恩。

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